Основной метод лабораторной диагностики малярии – обнаружение эритроцитарных паразитов в толстой капле или мазке крови. В практической работе исследуют преимущественно толстые капли, так как за один и тот же промежуток времени в толстой капле можно просмотреть в 30- 50 раз больший объем крови, чем в мазке, а следовательно, и количество плазмодиев в ней больше. К мазку обращаются лишь в тех случаях, когда видовую принадлежность найденных паразитов по толстой капле установить не удается. Для выявления возбудителей малярии кровь берут при первом же подозрении на эту инфекцию независимо от температуры тела (лучше всего во время лихорадки или сразу после озноба), поскольку паразиты циркулируют в крови и в интервале между приступами.

Предметные стекла, на которых готовят препараты, должны быть хорошо вымыты и обезжирены. Кровь берется с соблюдением правил асептики. Кожу пальца протирают спиртом и прокалывают стерильной иглой-копьем или толстой инъекционной иглой. Если кровь из мякоти пальца вытекает плохо, то больного просят сделать несколько энергичных движении рукой, кистью и слегка массируют палец. Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным стеклом.


Тонкие мазки крови приготавливают по методике, общепринятой для гематологических исследований. Мазок не должен доходить ни до конца, ни до краев предметного стекла. Поэтому капля крови должна быть диаметром не более 2–3 мм. Предметное шлифованное стекло, которым делается мазок, должно быть уже стекла, на которое наносят мазок. Для этого углы шлифованного стекла обламывают пинцетом. В целях приготовления мазка шлифованное стекло славят перед каплей крови под углом 45° и продвигают вперед до соприкосновения с ней. Когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, быстрым дви-жением делают мазок.

Для приготовления толстой капли крови на предметное стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм. Эту каплю размазывают иглой или углом предметного стекла в диск диаметром 10–15 мм. Толщина капли должна быть такой, чтобы сквозь нее можно было читать газетный шрифт Мазки не должны быть толстыми, поскольку после высыхания они растрескиваются и отстают от стекла. Обычно на стекло наносят 2–3 капли на некотором расстоянии одна от другой. Взятые капли должны быть отмечены. На обратной стороне стекла восковым карандашом указывается фамилия больного или соответствующий регистрационный номер.


Очень удобно наносить толстую каплю на влажный толстый мазок крови. В этом случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Простым карандашом на мазке делается маркировка препарата Такой препарат удобен еще и тем, что в мазке довольно хорошо сохраняется часть пораженных эритроцитов, а это важно для уточнения вида паразита. Преимущество данного метода в том, что капля, нанесенная на мазок, удерживается более прочно, чем нанесенная непосредственно на стекло.

Приготовленные толстые капли высушивают при комнатной температуре не менее 2–3 ч без какого-либо дополнительного подогревания во избежание фиксации крови. После высыхания капли на нее наливают краску Романовского- Гимза. разведенную как обычно (2 капли краски на 1 мл дистиллированной воды). Продолжительность окраски в среднем составляет 30- 45 мин. Окрашенную каплю осторожно ополаскивают водопроводной водой (сильная струя может смыть каплю) и просушивают в вертикальном положении. Фильтровальной бумагой ее высушивать нельзя. При окраске капли в водных растворах красок происходит выщелачивание гемоглобина из эритроцитов, вследствие чего в окрашенной капле эритроциты уже не видны. Из форменных элементов сохраняются лейкоциты и тромбоциты.

Мазки фиксируют, помещая их на 3 мин в метиловый или на 10 мин в 96% этиловый спирт. Зафиксированные препараты высушивают на воздухе, защищая от пыли и мух. Потом препараты помещают в специальный контейнер и окрашивают азур-эозиновым красителем по Романовскому – Гимза на протяжении 20- 30 мин.


По истечении этого срока контейнер подставляют под слабую струю воды и промывают. После того как из контейнера польется неокрашенная вода, остатки ее сливают и промывают еще раз. Не рекомендуется сначала сливать краску, а затем промывать мазок водой, поскольку пленка, образовавшаяся на поверхности красителя, может попасть на препараты и оказаться причиной Диагностической ошибки. Капля на мазке окрашивается так же, как толстая капля.

Промытые препараты высушивают и исследуют под микроскопом. В зараженных эритроцитах видны плазмодии малярии с голубой цитоплазмой и ярко-красным ядром. Нахождение плазмодиев малярии в крови больного является неоспоримым доказательством болезни.

Источник: indbooks.in

  • Простым карандашом на влажном мазке делают отметку: фамилия и инициалы больного, номер по списку и дата приготовления мазка и толстых капель.
  • Приготовленные мазки и толстые капли крови высушивают при ком­натной температуре, защитив от пыли и мух.
  • Оформляют бланк-направление и отсылают препараты в лабораторию.

Взятие кала для бактериологического исследования

Кал для бактериологического исследования берут из судна или непосред­ственно из прямой кишки (при отсутствии стула у больного).

Оснащение: пробирка с консервантом (30% глицериновая смесь) и металли­ческой петлей (или стеклянной трубочкой), судно, клеенка. Пробирку с кон­сервантом можно хранить в холодильнике не более 6—8 ч.

Последовательность действий при взятии кала из прямой кишки:


Приготовление толстой капли крови на малярийный плазмодий
Оформить направление (этикетку) по приведенному образцу и приклеить на пробирку.

  • Уложить больного на кушетку на левый бок. Ноги должны быть согнуты
    в коленях и приведены к животу. Под таз больного следует подложить клеенку.
  • Правой рукой достать из пробирки петлю, левой рукой раздвинуть ягодицы и вращательным движением ввести петлю в задний проход больного на глубину около 8—10 см, стараясь снять со стенки кишки кусочки ее содержимого. Стеклянную трубочку в данном случае применять нельзя из-за опасности повреждения слизистой оболочки кишки.
  • После взятия кала металлическую петлю осторожно погрузить в пробир­ку, не касаясь ее краев.
  • Пробирку с материалом направить на исследование в лабораторию.

При взятии кала из судна также оформляют направление, кал забирают сра­зу после акта дефекации металлической петлей или стеклянной трубочкой из 3 мест (избегая примесей крови) в количестве 3—5 г.

Предварительный результат исследования может быть получен из лаборато­рии на 2-е сутки, окончательный — через 4—5 сут.
Взятие мочи для бактериологического исследования


Оснащение: судно для подмывания больных, клеенка, ватные тампоны, сал­фетки, корнцанг, кувшин с теплой водой, слабо-розовым раствором перман-ганата калия или раствором фурацилина 1:5000, стерильный флакон или бан­ка на 100-200 мл.

Последовательность действий:

• Заполнить бланк-направление по образцу и наклеить его на стерильный флакон (банку).

Приготовление толстой капли крови на малярийный плазмодий

  • Уложить больного на спину, с согнутыми в коленях и разведенными
    ногами, под таз подложить судно и клеенку.
  • Подмыть больного.
  • Держа флакон в правой руке, левой рукой открыть его.
  • Предложить больному помочиться в судно и подставить флакон под сред­нюю порцию струи мочи*. Осторожно собрать 50—100мл мочи, чтобы не на­мочить снаружи флакон и его пробку. Закрыть флакон стерильной пробкой.
  • Отправить флакон в лабораторию.

Взятие промывных вод желудка

для бактериологического исследования

Желудок промывают чистой водой (без лекарственных средств). Первую порцию промывных вод в количестве 100—200мл отправляют на бактериоло­гическое исследование в стерильной стеклянной банке.

Взятие мазка из зева на бактериологическое исследование

ОПриготовление толстой капли крови на малярийный плазмодий
снащение:
пробирка со стерильным тампоном, шпатель.

Последовательность действий:

• Заполнить бланк-направление по образцу и наклеить его на пробирку.


  • Усадить больного лицом к источнику света.
  • Взять в левую руку шпатель и пробирку.
  • Надавить шпателем на корень языка. Правой рукой извлечь из пробир­ки стерильный тампон за пробку.
  • Провести тампоном по дужкам и нёбным миндалинам (слева направо), не касаясь слизистой полости рта.
  • Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести сте­рильный тампон в пробирку.
  • Отправить пробирку в лабораторию.

Взятие мазка из носа на бактериологическое исследование

Оснащение: пробирка со стерильным тампоном. Последовательность действий:

Заполнить бланк-направление по образцу и наклеить его на пробирку.

Приготовление толстой капли крови на малярийный плазмодий

  • Усадить больного лицом к источнику света, попросить его слегка запро­кинуть назад голову.
  • Взять пробирку в левую руку, правой рукой извлечь из нее тампон.
  • Большим пальцем левой руки приподнять кончик носа больного, пра­вой ввести тампон в нижний носовой ход легким вращательным движением с одной, а затем с другой стороны.

  • Осторожно, не касаясь наружной поверхности, ввести тампон в пробирку.
  • Отправить пробирку в лабораторию.

Взятие крови из вены на серологические реакции

Оснащение: халат, шапочка, маска, перчатки, 2 лотка (стерильный и несте­рильный), стерильные ватные тампоны, 70° спирт, стерильный шприц на 10— 20 мл с иглой, жгут, подушечка, марлевый бинт, стерильная пробирка с ватно-марлевой пробкой, штатив.

Источник: filling-form.ru

Что такое малярия?

Малярия — опасное и очень заразное паразитарное заболевание, легко передающееся через укусы комаров рода анофелис и через кровь, например, при переливании. Недуг сопровождается повторяющимися приступами лихорадки, наиболее широко распространен в странах с влажным и жарким климатом. После того как паразит попал в тело, он начинает размножаться, поражает клетки, разрушает их, лавинообразно наращивая свое присутствие. Посему решившие посетить жаркие тропические страны должны проявлять повышенную осторожность, и при наименьших подозрениях сдать анализ крови. Заражению особенно подвержены:

  • люди с низким иммунитетом,
  • дети до 5 лет,
  • беременные женщины.

Виды плазмодий

Всего различают четыре различных вида малярии и четыре типа плазмодий, ее вызывающие:

  1. Plasmodium falciparum, что провоцирует тропическую лихорадку — одну из самих опасных и нуждающихся в срочном лечении разновидностей заболевания.
  2. Plasmodium vivax — провоцирует появление трехдневной малярии.
  3. Plasmodium malariae — является источником четырехдневной лихорадки.
  4. Plasmodium ovale — главная причина малярии овале (недуга вроде трехдневной).

Симптомы малярии

Главными (и самим очевидными) симптомами, проявляющимся при малярии, являются повторяющиеся с равными промежутками времени приступы лихорадки, повышение температуры и озноб. Длятся они несколько часов и сопровождаются такими признаками:

  • повышение температуры до 41 °C;
  • дрожь;
  • проявления кашля;
  • повышенная потливость (обычно сопровождает окончание приступа и снижение температуры).

Кроме того приступы могут сопровождаться такими явлениями как:

  • расстройства пищеварительной системы,
  • боль в разных частях тела, мышцах, голове,
  • повышенная утомляемость,
  • желтуха.

Хотя обычно симптомы при малярии проявляются спустя несколько недель после заражения, некоторые возбудители могут месяцами жить в организме незаметно. Во время острых приступов наблюдается тенденция к изменению состава крови, может возникать анемия, в особенности при тропической лихорадке. Возможно увеличение внутренних органов, например селезенки, но точную оценку может дать лишь врач.

Лабораторная диагностика

Перед самым началом приема, пациент обязан оповестить врача о том, что находился в местах, где были отмечены случаи заболевания малярией или же, если он был в непосредственном контакте с зараженным человеком.


Диагностика малярии начинается с опроса больного, который рассказывает доктору о проявившихся симптомах. Малярия протекает по-разному, возможно тяжелое  течение заболевания, характеризующиеся яркой симптоматикой и практически бессимптомное протекание болезни. В обоих случаях, в виду отсутствия подобающего лечения, распространение инфекции приводит к смерти зараженного.

После опроса пациента, врач осматривает кожные покровы больного на предмет сухости и высыпаний, которые могли быть вызваны повышением температуры во время лихорадки. Отмечается, что нередко можно заметить, что зараженный стал неестественно бледным, кожа даже может отдавать в сероватые оттенки, это может быть связанно с тем, что у человека низкий гемоглобин и повышенные эритроциты.

В случае выявления бледной кожи, наряду со специфическими для малярии обследованиями, назначается стандартный при любом обследовании общий анализ периферической крови из пальца. Лабораторное исследование проводится для того, чтобы проанализировать показатели гемоглобина, лейкоцитов, РОЭ и эритроцитов в крови.

Низкий показатель гемоглобина указывает на то, что была нарушена естественная циркуляция крови и пациент страдает опасным последствием малярии – анемией. Анемия вызывает покалывания в руках и головокружения по причине недостаточного обогащения головного мозга и органов человека кислородом.


Повышенные лейкоциты и РОЭ в любом случае будут выявлены при малярии, но врач обращает внимание на их количество. В случае если показатели сильно повышены – инфекция находится уже не на первичной стадии и требуется интенсивное и оперативное лечение.

Большая концентрация в крови белых кровяных телец – лейкоцитов, вызвана реакцией организма на распространяющуюся инфекцию в организме. Повышенный РОЭ указывает на сильный воспалительный процесс, который может быть вызван симптомами малярии – увеличением печени и селезенки.

Повышенные эритроциты могут прямо указывать на концентрацию малярийных плазмодий в организме человека.

Аллергия может проявляться у людей, которые находились в странах, где отмечалась малярия, например в том случае, если были подвержены укусу насекомого, не характерного для места постоянного жительства или же употребляли непривычную пищу.

Последующая, специфическая лабораторная диагностика малярии назначается только в том случае, если у врача есть серьезные подозрения на наличие у пациента опасной инфекции.

В случае выявления серьезных отклонений от естественных показателей в крови, врач назначает не только терапию от малярии (если диагноз подтвердится), но и сопутствующее лечение осложнений, которые уже были вызваны заболеванием.

Существует несколько методов диагностики малярии, которые указывают не только на наличие инфекции в организме человека, но и на стадию ее распространения. Врачи назначают сразу несколько анализов, чтобы изучить полностью всю клиническую картину.

К самым ключевым лабораторным исследованиям относятся следующие:

  • Лабораторная диагностика по изучению толстой капли крови помогает определить вид малярийного плазмодия в организме человека. Отмечается, что это самый доступный по цене анализ. Сбор биологического материала может производиться на любой стадии заболевания.
    При малярии, в общей массе красных кровяных телец просвечиваются эритроциты, которые более бледные и увеличены в размерах. Кроме вида плазмодиев, анализ толстой капли крови определяет и стадию распространения заболевания.
  • Лабораторная диагностика при изучении тонкой капли крови проводится в случае, если результаты исследовании толстой капли крови выявили подозрение на малярию. Этот анализ также помогает выявить плазмодии в организме и определить стадию распространения заболевания.
  • Отмечается иммунологическое исследование одного из видов малярии – тропического. Приведенная диагностика производится зачастую в тех местах, где наиболее распространена эта форма инфекции. Приведенный анализ может осуществить человек и самостоятельно.
    Определение определенного вида белков в крови является эспресс-тестом, а в случае негативного результата, заболевание полностью не исключается, анализ показывает лишь, что в организме пациента не обнаружена тропическая малярия.
  • Существует и другой метод исследования, который носит название серологический. Этот анализ проводится врачом и определяет наличие антител, характерных для заболевания. Приведенная диагностика используется в местах, где малярия не распространена.
    В случае если характерные антитела в крови пациента отсутствуют, опасная инфекция полностью исключается. Биологическим материалом для анализа служит венозная кровь.

При определении малярии с низким уровнем распространения плазмодий, используется иммунологическое исследование, которое носит название полимерно-цепная реакция крови. В качестве биологического материала используется венозная кровь или толстая капля периферической крови из пальца.

Этот анализ намного дороже аналогичных ему. Изучают показатели исключительно опытные лаборанты, это исследование проводится в редких случаях.

1.
Ку-лихорадка

природно-очаговая инфекция с разнообразными
ме­ханизмами заражения, вызываемая
риккетсией Coxiellaburnettiс
резервуарами
возбудителей в природных очагах
(гамазовые и аргазовые клещи). Это мелкие,
кокковидные, палочковидные формы
размером 0,25—1 мкм. Мельчайшие формы
возбудителя проходят через ультрафильтрацию.

Отличаются
полиморфизмом, способны образовывать
эль-формы (L-формы).

Риккетсий
Coxiellabumettiявляются
внутриклеточными пара­зитами.
Культивируются в желточных мешках
развивающихся куриных эмбрионов, на
культурах тканей, на сывороточном агаре.
В отличие от других риккетсий возбудитель
Ку-лихорадки не имеет общих антигенов
ни
с одним из видов протея, обла­дают
фазовой изменчивостью (в РСК антигены
I
фазы обна­руживаются в период
реконвалесценции, а II
фазы — в ранний период болезни).

Из
лабораторных животных наиболее
чувствительны к риккет-сиям
Coxiellaburnettiморские
свинки. После заражения у них развивается
генерализованная инфекция с поражением
внут­ренних органов.

Риккетсий
Coxiellaburnettiотличаются
относительно высокой
устойчивостью к
ультрафиолетовым лучам. В водопроводной
воде они остаются жизнеспособными до
160 дней, в молоке — 125 дней, масле — 40
дней, мясе — 30 дней. В сухих фекалиях
инфицированных клещей риккетсий
сохраняют жизнеспособ­ность до 1,5
лет, в сухих фекалиях и моче пораженных
живот­ных — до нескольких недель, в
шерсти животных — до 9—12 мес. Погибают
при кипячении более 10 мин. Риккетсий
устойчивы к ультрафиолетовому облучению,
к воздействию формалина, фенола, хлорной
извести и других дезинфекторов в обычных
рабочих концентрациях.

2.
Бактериологический
метод основан
на
выделении культуры воз­будителя из
крови, мокроты, ликвора, грудного молока
или мочи больных с использованием
тканевых сред. Для
постановки биоло­гической пробы
используют морских свинок, белых мышей
и крыс. У морских свинок через 7 дней
после заражения разви­вается лихорадка.

Риккетсий
Coxiellaburnettiв
большом количестве накапливают­ся в
печени, селезенке и других органах.
Иногда у морских свинок после заражения
бывает бессимптомное течение ин­фекции,
что заставляет прибегать к постановке
серологических
реакций
с целью окончательной диагностики.
Специфичность инфекции удается доказать
иногда только через нескольких пассажей.
Чистые культуры выделяют путем введения
в жел­точный мешок куриных эмбрионов
исследуемого материала.

3.
Серологическая
диагностика —
наиболее проста, доступна и не менее
надежна. Обычно
применяют реакцию связывания ком­племента
и реакцию агглютинации. В РСК с антигеном
диаг­ностический титр 1 : 8 — 1 : 16
выявляется с 10—12-го дня бо­лезни (с
антигеном II
фазы) и достигает максимального значения
на 3—4-й неделе болезни (с антигеном I
фазы). Комплемент-связывающие антитела
в низких титрах выявляются у
рекон-валесцентов в течение ряда лет.

Надежным
методом диагностики является
иммунолюминис-центный
метод исследования.

Для
непосредственной и ретроспективной
диагностики Ку-лихорадки предложена
внутрикожная
проба. Трудности
приго­товления стандартного антигена
лишают ее практической цен­ности,
хотя при эпидемиологических и
эпизоотологических обследованиях эта
проба могла бы быть полезной.


Для
выявления природных очагов Ку-лихорадки
важны массо­вые исследования клещей
и диких животных на возбудителя. Методом
флюоресцирующих антител исследуются
гемолимфа и кишечник клещей,
препараты-отпечатки внутренних органов
животных на зараженность риккетсиями
Coxiellaburnetti.

1.филококки
широко
распространены в природе и
являются возбудителями многих заболеваний
человека и животных, весьма различных
по своим проявлениям, от легких местных
фолли­кулитов до стафилококкового
сепсиса. Наиболее часто стафи­лококковые
заболевания возникают у рожениц и
новорожденных в родильных домах (сепсис,
маститы, пиодермия и пневмония у
новорожденных). Большинство заболеваний
стафилококко­вой этиологии возникают
в результате заражения патогенными
стафилококками, устойчивыми к антибиотикам.

Биология
стафилококков, культуральные свойства:
для
выра­щивания, избирательного выделения
и дифференцирования стафилококков
существует ряд сред. Корреляцию между
био­химическими и культуральными
свойствами стафилококков и их патогенностью
можно установить при выращивании на
сре­де, содержащей водный 1,5%-ный агар,
хлористый натрий, магний, дрожжевой
экстракт, желатин, двузамещенный
фос­форнокислый калий.

Когда происходит сбор анализа крови на выявление антител

Исходя из того, что определяются несколько видов инфекции, которую диагностируют у человека, биологический материал для лабораторной диагностики инфекции может отличаться. Как правило, наибольшая результативность исследований отмечается, когда кровь у человека берут во время приступа.

Однако в промежуточный период сбор также может производиться. В зависимости от предполагаемого анализа берут венозную или периферическую кровь из пальца. В случае если поражение эритроцитов превысило 2%, у пациента диагностируется тропическая малярия.

Отсутствует вероятность, что результаты лабораторного исследования будут смазаны, в случае, если сдача крови производилась натощак, и в крови пациента не было большой концентрации противомалярийных или противовоспалительных препаратов. При условии, что данные правила не были соблюдены, врач назначает повторный сбор биологического материала.

Если один анализ выявил только подозрение на инфекцию, диагноз с полной достоверностью поставить не представляется возможным. В обязательном случае проводятся дополнительные лабораторные исследования.

В случае выявления вида малярийных плазмодий и стадии их распространения, врач назначает индивидуальное лечение. Крайне опасно принимать меры самостоятельно, потому, что терапия неподходящими лекарственными средствами может нанести больше вреда, чем пользы. Продолжительность и интенсивность лечения различны для каждого из видов малярии.

Если же человек решил сдать анализы самостоятельно, то цена будет разниться в зависимости от лаборатории. Так, в среднем анализ «толстая капля» и мазок будет составлять в пределах от 300 до 1000 рублей. Иммунологические методы – в пределах 1000 рублей. Экспресс-тесты являются самыми дорогостоящими, их стоимость начинается от 3000-5000 рублей за упаковку.

Своевременная и правильная лабораторная диагностика позволяет выявить и правильно купировать плазмодия, так как заболевание является очень тяжёлым и может привести к летальности. Для постановки диагноза следует сдать несколько анализов. В случае выявления паразита назначается индивидуальное для каждого пациента лечение, проводится оно в инфекционных отделениях.

4. Исследование комаров на зараженность малярийными паразитами

1.
Паразитологический
диагноз малярии основан
на
обнаружении паразитов в окрашенных
препаратах (толстая
капля и мазок)
крови.
Паразиты
могут присутствовать в крови не только
во время лихорадочных приступов и
промежутков между присту­пами,
следующими один за другим, но и в течение
длительных периодов, на протяжении
которых не наблюдается повышения
температуры.

Наличие
паразитов в крови при отсутствии
лихорадочных при­ступов называется
паразитоносительством.
Такие
люди зараз­ны для комаров. При массовых
обследованиях следует брать кровь вне
зависимости от наличия приступов.
Техника
приготовления и окраски мазка —
мазок готовят как обычно. После того
как мазок высохнет, его фиксируют в
96%-ном этиловом спирте 15 мин или в
метиловом спирте в течение 3 мин.
Высушенные после фиксации мазки
окраши­вают краской Романовского,
разведенной дистиллированной водой,
ркрашивают в
течение
30—50 мин, в зависимости от качества
краски. После окрашивания препарат
споласкивают водой и высушивают на
воздухе.

Техника
приготовления и окраски толстой капли.
На
стекле при­готовляют мазок, а потом
на еще влажный мазок дают упасть капле
крови. Капля равномерно растекается,
образуя круг. По­сле того как капля
высохнет, на мазке простым карандашом
делают соответствующую отметку. Препарат
без фиксации ок­рашивают. Затем
осторожно (чтобы не смыть каплю) препарат
споласкивают водопроводной водой и
высушивают. Мазки и толстые капли
микроскопируют имммерсионной системой.
2.

Морфология малярийных паразитов в мазке
крови. Мерозоит,
внедрившись в
эритроцит,
превращается в молодой шизонт, имеющий
вид кольца. Затем паразит, увеличиваясь,
принимает амебовидную форму, при этом
сохраняется просвет (вакуоль) между
ядром паразита и основной частью его
цитоплазмы. В цитоплазме паразита
появляются зерна пигмента. Амебовид­ный
шизонт заполняет значительную часть
эритроцита, затем начинает округляться,
вакуоль исчезает (стадия подготовки к
делению), пигмент начинает собираться
в отдельные пучки.

У пл.
фальсипарум скучивание
пигмента наступает еще до пол­ного
формирования морулы. Мерозоиты расходятся,
попадают в плазму крови, часть из них
погибает, часть внедряется в но­вые
эритроциты.

Гамонты.
Форма
гамонтов у всех малярийных паразитов,
за исключением тропической малярии,
круглая или слегка оваль­ная. При
тропической малярии плазмодий имеет
вытянутые гамонты с закругленными
концами. Мужские и женские гамон­ты
различаются между собой по величине и
структуре ядра (интенсивности окраски
цитоплазмы). Женские гамонты — яд­ро
небольшое, компактное; цитоплазма
красится в интенсив­ный голубой цвет.
Мужские гамонты — ядро большое,
цито­плазма красится бледно, часто
зона вокруг ядра принимает фиолетовый
оттенок.

Морфология
малярийных паразитов в толстой капле.
В
толстой капле, поскольку ее окрашивают
в нефиксированном виде, эритроциты
выщелачиваются, а малярийные паразиты
претер­певают значительную деформацию.
При четырехдневной и тропической малярии
пораженные эритроциты в толстой капле
выщелачиваются полностью, так же как и
нормальные. При трехдневной малярии в
толстой капле строма эритроцитов
со­храняется и диагностика малярийного
паразита по толстой ка­пле облегчается.

Кольца в толстой капле обычно смяты,
вытя­нуты в виде восклицательного
знака, иногда разорваны в виде запятой.
Амебовидные шизонты часто бывают
уплотненными, лентовидные шизонты
четырехдневной малярии в толстой ка­пле
округляются и неотличимы от амебовидных
шизонтов. Морулы распознаются в толстой
капле легко. Цитоплазма паразитов в
результате воздействия химиотерапев-тических
препаратов окрашивается слабее,
приобретает стекло­видный оттенок,
становится вакуолизированной, распадается
на отдельные комочки, ядро становится
рыхлым или, наоборот, более компактным.
Иногда пигмент собирается в кучки,
вы­талкивает из паразита. В толстых
каплях распознавание таких подвергшихся
деформации паразитов становится более
труд­ным, а иногда и невозможным.

Серологическая
диагностика малярии включает
иммунофер-ментную агглютинацию, реакцию
непрямой гемагглютинации и др., которые
имеют наибольшее значение в неэндемичных
районах.

3.
В мазках крови и толстых каплях малярийные
паразиты могут быть приняты за мерозоит,
скопление бляшек может симули­ровать
морулу. В препаратах, окрашенных по
Романовскому,
бляшки
отличаются от мерозоитов по следующим
признакам: мерозоит
состоит из красного ядра и голубой
цитоплазмы. Фон бляшки в мазке иногда
окрашивается в бледно-голубой цвет,
однако ее зернистость принимает красный
цвет более светлого оттенка, чем у ядер
мерозоитов.

Техника забора крови и приготовления мазков для исследования на малярию.

В
препаратах могут быть обнаружены также
посторонние
мик­роорганизмы, по форме напоминающие
малярийных паразитов: грибки,
одноклеточные водоросли, свободноживущие
простей­шие. Некоторые одноклеточные
формы с компактным ядром в центре,
окрашивающимся по
Романовскому в
ярко-красный цвет, симулируют гамонты
тропической малярии. Их легко от-, лйчить
по отсутствию пигмента. Свободноживущие
простей­шие с одним или несколькими
жгутами могут быть приняты за стадию
образования мужских гамет малярийного
паразита.

4.Комаров
вскрывают и определяют наличие
ооцист на желудке и спорозоитов в слюнных
железах. Ооцисты
видны в нативных препаратах.

Незрелые
ооцисты выглядят в таких препаратах
как круглые гомогенные образования с
пигментом, состоящим из несколь­ких
глыбок.

В зрелых
ооцистах видны хорошо сформировавшиеся
споро-зоиты, тесно прилегающие друг к
другу. Ряды спорозоитов в виде частокола
располагаются по отношению друг к другу
под разными углами, в результате чего
ооциста приобретает моза­ичный вид,
при надавливании покровного стекла из
ооцист выходят спорозоиты.

В
слюнных железах спорозоиты расположены
рядами перпен­дикулярно к протоку
слюнных желез, а также в виде конгло­мератов.
В секрете слюнных желез спорозоиты
попадают в ок­ружающую жидкость, в
которой хорошо заметны вследствие их
подвижности.

Не можете избавиться от паразитов? Наши читатели нашли решение

Судя по тому, что вы зашли на наш сайт — вы или ваши близкие столкнулись с паразитами не по наслышке.
Вы уже изучили тонны материалов на тему паразитов и их лечения? Неудивительно, ведь паразиты опасны для человека. Они хорошо себя чувствуют в наших организмах, а вызванные ими заболевания бывают крайне опасны и могут перетечь в хроническое состояние.

  • Неприятный запах изо рта;
  • Высыпания на коже;
  • Мешки под глазами;
  • Бессонница;
  • Головные боли;
  • Отсутствие аппетита;
  • Запоры или понос;
  • Боли в животе;
  • Частые простуды;
  • Хроническая усталость;


Эти симптомы будут преследовать вас при наличии паразитов!

Но можно ли победить заразу и при этом не навредить себе?

Оказалось, что паразиты страшно боятся простого чая.

***************************************************************************************************************************************************

Источник: medgastro.ru

Показания:диагностика малярии, менингококковой инфекции.

Оснащение:

Предметные стекла, обезжиренные смесью Никифорова, 70% спирт, стерильные индивидуальные перья-копья, пинцет, ватные шарики, лоток для отработанного материала.

При исследовании крови на малярийные плазмодии готовят обычно 10 тонких мазков крови и 5 «толстых капель» крови.

Техника взятия крови и приготовление тонкого мазка:

— установить доверительные отношения с пациентом;

— объяснить цель и ход процедуры;

— вымыть и просушить руки;

— надеть перчатки, маску;

— обработать спиртом нижнюю фалангу 4 пальца руки;

— проколоть мякоть нижней фаланги 4 пальца индивидуальным пером-копьем;

— поместить перо в лоток для отработанного материала;

— первую каплю крови снять сухим ватным шариком;

— повернуть палец проколом вниз;

— прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови (или нанести каплю крови с помощью капилляра Панченкова);

— поставить шлифовальное стекло перед каплей крови под углом 45 градусов;

— продвинуть шлифовальное стекло до соприкосновения с каплей крови;

— когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, сделать мазок быстрым движением шлифовального стекла;

— подписать мазок;

— приготовленный мазок высушить на воздухе в горизонтальном положении;

— затем мазок фиксируют и окрашивают по Романовскому.

Техника приготовления «толстой капли» крови.

— приготовить тонкий мазок крови;

— на свежий мазок крови до того, как он высохнет нанести одну, две капли крови (дать им упасть);

Кровь растекается в правильный диск. При этом форменные элементы и паразиты не травмируются.

— высушить препараты на воздухе при комнатной температуре в горизонтальном положении в течение 3-4 часов;

— оформить направление в паразитологическую лабораторию;

— провести дезинфекцию лотка, пера-копья, пинцета, ватных шариков;

— снять маску, перчатки;

— вымыть и просушить руки;

— приготовленные «толстые капли крови» выщелачивают дистиллированной водой и окрашивают как мазки (не фиксируя).

Примечание:

— при взятии крови строго соблюдать правила асептики;

— предметные стекла держать пальцами за края, чтобы не оставить отпечатков;

— после высыхания капли через нее должен слабо просвечиваться крупный печатный текст;

— на одном предметном стекле можно приготовить 2 «толстые капли», кровь для исследования лучше брать во время лихорадочного периода и в межприступный период.

 

 

 

ПРОДЕМОНСТРИРУЙТЕ ТЕХНИКУ ВВЕДЕНИЯ 500 000 ЕД НАТРИЕВОЙ СОЛИ БЕНЗИЛПЕНИЦИЛЛИНА ВНУТРИМЫШЕЧНО

Показание: этиотропная терапия многих инфекционных заболеваний.

Инструкция 2 курса – внутримышечная инъекция

ПРАВИЛА РАБОТЫ В БОКСЕ.

Бокс предназначен для приема, осмотра, обследования, оказания необходимой лечебной помощи, проведения консультации инфекционным больным.

Для предотвращения ВБИ при работе в боксе необходимо строго выполнять все правила санэпидрежима и придерживаться принципа поточно-пропускной системы. Этому способствует устройство бокса и его оснащение.

Бокс имеет два предбокса, смотровую бокса, санитарный узел. Один предбокс предназначен для медперсонала. Вход в него находится со стороны коридора приемного отделения. В этом предбоксе имеется кран с раковиной, мыло, дезинфектант для рук, 3 полотенца, 3 халата (для врача, медсестры и санитарки), бак для дезинфекции, тумбочка, на которой находятся две емкости для ветоши (чистой и отработанной), внутри тумбочки – флакон с дезинфектантом. Второй предбокс предназначен для входа и выхода больного со стороны территории больницы. Смотровая бокса приемного отделения снабжена всем необходимым для приема и осмотра больного: рожковая вешалка для верхней одежды пациента и сопровождающих его лиц, весы, ростомер, кушетка, стол (или пеленальный столик), стул, емкости для чистых шпателей, градусников и для их дезинфекции. Вся мебель должна быть деревянной, пластмассовой или с кожаной обивкой. Стены покрашены масляной краской. Каждый бокс снабжен уборочным инвентарем, предназначенным для использования только в данном боксе, имеет четкую маркировку.

В боксах предназначенных для лечения больных имеется санитарная комната, и окно для подачи пищи и лекарств.

В боксе должен приниматься только один больной, несмотря на сходство предварительных диагнозов во избежание последствий возможной ошибки в диагнозе и перекрестного заражения.

Перед входом в предбокс медперсонал надевает маску, плотно закрывает дверь в коридор (во избежание прямого потока воздуха между боксом и коридором), моет руки, просушивает их, надевает на халат второй халат, шапочку для работы именно в этом боксе, заходит в смотровую бокса, плотно закрывает дверь. Осмотрев больного, выходит в служебный предбокс, плотно закрывает дверь, снимает второй халат, шапочку, моет руки, дезинфицирует, просушивает их, выходит из предбокса, плотно закрывает дверь.

Каждый инфекционный больной осматривается на педикулез и заразные кожные заболевания. На него заполняется медицинская статистическая документация, а также карта экстренного извещения (ф. 058/у).

Осмотренный больной в сопровождении курьера направляется для лечения в отделение, соответствующее профилю его заболевания, выходя через тот предбокс через который входил.

После осмотра каждого инфекционного больного обязательно производится заключительная дезинфекция с кварцеванием и проветриванием (с учетом механизма передачи инфекции).

 

 

 

Источник: cyberpedia.su

Обнаружение плазмодиев в толстой капле и мазке крови

Паразитологический диагноз малярии основан на обнаружении паразитов в окрашенных препаратах (толстая капля и мазок) крови. Паразиты могут присутствовать в крови не только во время лихорадочных приступов и промежутков между присту­пами, следующими один за другим, но и в течение длительных периодов, на протяжении которых не наблюдается повышения температуры.

Наличие паразитов в крови при отсутствии лихорадочных при­ступов называется паразитоносительством.

Такие люди зараз­ны для комаров. При массовых обследованиях следует брать кровь вне зависимости от наличия приступов. Техника приготовления и окраски мазка — мазок готовят как обычно. После того как мазок высохнет, его фиксируют в 96%-ном этиловом спирте 15 мин или в метиловом спирте в течение 3 мин. Высушенные после фиксации мазки окраши­вают краской Романовского, разведенной дистиллированной водой, ркрашивают в течение 30—50 мин, в зависимости от качества краски. После окрашивания препарат споласкивают водой и высушивают на воздухе.

Техника приготовления и окраски толстой капли. На стекле при­готовляют мазок, а потом на еще влажный мазок дают упасть капле крови. Капля равномерно растекается, образуя круг. По­сле того как капля высохнет, на мазке простым карандашом делают соответствующую отметку. Препарат без фиксации ок­рашивают. Затем осторожно (чтобы не смыть каплю) препарат споласкивают водопроводной водой и высушивают. Мазки и толстые капли микроскопируют имммерсионной системой.

Морфология малярийных паразитов в мазке крови.

Мерозоит, внедрившись в эритроцит, превращается в молодой шизонт, имеющий вид кольца. Затем паразит, увеличиваясь, принимает амебовидную форму, при этом сохраняется просвет (вакуоль) между ядром паразита и основной частью его цитоплазмы. В цитоплазме паразита появляются зерна пигмента. Амебовид­ный шизонт заполняет значительную часть эритроцита, затем начинает округляться, вакуоль исчезает (стадия подготовки к делению), пигмент начинает собираться в отдельные пучки. Для плазмодия малярии шизонты — лентовидные формы. Ядро паразита начинает делиться, а затем цитоплазма паразита де­лится так, что к каждому дочернему ядру прилегает отдельный комочек   цитоплазмы   (меруляция).   В   результате   получается кучка мерозоитов — морула. Пигмент на стадии морулы собран в одну компактную кучу.

У пл. фальсипарум скучивание пигмента наступает еще до пол­ного формирования морулы. Мерозоиты расходятся, попадают в плазму крови, часть из них погибает, часть внедряется в но­вые эритроциты.

Гамонты.

Форма гамонтов у всех малярийных паразитов, за исключением тропической малярии, круглая или слегка оваль­ная. При тропической малярии плазмодий имеет вытянутые гамонты с закругленными концами. Мужские и женские гамон­ты различаются между собой по величине и структуре ядра (интенсивности окраски цитоплазмы). Женские гамонты — яд­ро небольшое, компактное; цитоплазма красится в интенсив­ный голубой цвет. Мужские гамонты — ядро большое, цито­плазма красится бледно, часто зона вокруг ядра принимает фиолетовый оттенок.

Морфология малярийных паразитов в толстой капле.

В толстой капле, поскольку ее окрашивают в нефиксированном виде, эритроциты выщелачиваются, а малярийные паразиты претер­певают значительную деформацию. При четырехдневной и тропической малярии пораженные эритроциты в толстой капле выщелачиваются полностью, так же как и нормальные. При трехдневной малярии в толстой капле строма эритроцитов со­храняется и диагностика малярийного паразита по толстой ка­пле облегчается. Кольца в толстой капле обычно смяты, вытя­нуты в виде восклицательного знака, иногда разорваны в виде запятой. Амебовидные шизонты часто бывают уплотненными, лентовидные шизонты четырехдневной малярии в толстой ка­пле округляются и неотличимы от амебовидных шизонтов. Морулы распознаются в толстой капле легко. Цитоплазма паразитов в результате воздействия химиотерапев-тических препаратов окрашивается слабее, приобретает стекло­видный оттенок, становится вакуолизированной, распадается на отдельные комочки, ядро становится рыхлым или, наоборот, более компактным. Иногда пигмент собирается в кучки, вы­талкивает из паразита. В толстых каплях распознавание таких подвергшихся деформации паразитов становится более труд­ным, а иногда и невозможным.

Серологическая диагностика малярии включает иммунофер-ментную агглютинацию, реакцию непрямой гемагглютинации и др., которые имеют наибольшее значение в неэндемичных районах.

 

В мазках крови и толстых каплях малярийные паразиты могут быть приняты за мерозоит, скопление бляшек может симули­ровать морулу.  В препаратах, окрашенных по Романовскому, бляшки отличаются от мерозоитов по следующим признакам: мерозоит состоит из  красного  ядра и  голубой цитоплазмы. Фон бляшки в мазке иногда окрашивается в бледно-голубой цвет, однако ее зернистость принимает красный цвет более светлого оттенка, чем у ядер мерозоитов.

В препаратах могут быть обнаружены также посторонние мик­роорганизмы, по форме напоминающие малярийных паразитов: грибки, одноклеточные водоросли, свободноживущие простей­шие. Некоторые одноклеточные формы с компактным ядром в центре, окрашивающимся по Романовскому в ярко-красный цвет, симулируют гамонты тропической малярии. Их легко от-, лйчить по отсутствию пигмента. Свободноживущие простей­шие с одним или несколькими жгутами могут быть приняты за стадию образования мужских гамет малярийного паразита.

 

Комаров вскрывают и определяют наличие ооцист на желудке и спорозоитов в слюнных железах. Ооцисты видны в нативных препаратах.

Незрелые ооцисты выглядят в таких препаратах как круглые гомогенные образования с пигментом, состоящим из несколь­ких глыбок.

В зрелых ооцистах видны хорошо сформировавшиеся споро-зоиты, тесно прилегающие друг к другу. Ряды спорозоитов в виде частокола располагаются по отношению друг к другу под разными углами, в результате чего ооциста приобретает моза­ичный вид, при надавливании покровного стекла из ооцист выходят спорозоиты.

В слюнных железах спорозоиты расположены рядами перпен­дикулярно к протоку слюнных желез, а также в виде конгло­мератов. В секрете слюнных желез спорозоиты попадают в ок­ружающую жидкость, в которой хорошо заметны вследствие их подвижности.

Источник: alexmed.info

Приготовление толстой капли крови на малярийный плазмодий

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

Этот сайт использует Akismet для борьбы со спамом. Узнайте как обрабатываются ваши данные комментариев.