Малярия – инфекционное заболевание, характеризующееся поочередно сменяющимися приступами озноба и лихорадки. Возбудителем инфекции является паразит – малярийный плазмодий. На сегодняшний момент статистика неутешительна. Каждый год от этого заболевания в мире умирает до одного миллиона человек. Поэтому тщательная и своевременная лабораторная диагностика малярии очень важна. Паразитирует малярийный плазмодий в организмах двух хозяев. Первым является самка комара вида Anopheles. В организме комара протекает половое размножение, или спорогония. Вторым организмом является человек, где происходит бесполое размножение или шизогония. В организме человека плазмодии развиваются в эритроцитах, помимо этого, они питаются гемоглобином и разрушают уже атакованные эритроциты.

Толстая капля на малярию

«Толстая капля» малярийного плазмодия

Основой лабораторной диагностики в выявлении малярийного плазмодия является микроскопия крови.


от метод называется «толстая капля». Данное исследование считается достоверным и не очень затратным, но трудоемким. Биоматериал на малярию рекомендуется брать у пациента именно в момент приступа лихорадки, так как именно в этот момент вероятность обнаружения плазмодия наиболее высока. После взятия делаются мазки и оцениваются под микроскопом. При присутствии паразита эритроциты значительно увеличены, могут иметь на поверхности зернистость. Данный тест на малярию может достоверно обнаружить не только самого возбудителя, но и вид паразита, а также стадию развития заболевания.

Помимо толстой капли, исследуется тонкий мазок крови. Метод проводится так же, как и в предыдущем случае, оцениваются морфологические изменения эритроцитов. Проделывается он для подтверждения и не является основным.

Затем биоматериал отправляется на иммуноферментный анализ (ИФА), в котором будут определяться антитела к возбудителю, и на полимеразную-цепную реакцию (ПЦР). Последнее исследование является самым достоверным, так как определяет непосредственно генетический материал возбудителя, но такой тест на малярию является самым дорогим.

Еще к основным диагностикумам для определения инфекции относят общий анализ крови и мочи. При данной болезни в результате будет интерпретироваться прогрессирующий воспалительный процесс, проходящий в организме. А также будут признаки анемии. Это сниженный гемоглобин и сниженное количество эритроцитов, что говорит о захвате их паразитом. А вот лейкоциты и тромбоциты будут значительно повышены – это свидетельствует о воспалении.

С помощью общего анализа мочи можно обнаружить гемоглобин, а также эритроциты. В сочетании с общим анализом крови врач уже может подозревать такое заболевание, как малярия.


В дополнение могут назначить биохимическое исследование, в котором при инфекции будет наблюдаться повышенное количество трансаминаз, альбумина и билирубина. С-реактивный белок также дает положительный результат.

Паразитологический метод

Паразитологический метод направлен на выявление половых и бесполых форм паразита посредством исследования крови. Диагностика болезни паразитологическим способом включает в себя два исследования. Это «толстая капля», является основным, по результатам которого врач может выставить диагноз, и «тонкий мазок».

«Толстая капля»

Суть заключается в том, что обрабатывается большое количество крови за один промежуток времени. На предметное стекло наносятся 2-3 большие капли, посредством специальной иглы равномерно распределяются. После этого мазок высушивается на свежем воздухе или в термостате и окрашивается по методу Романовского-Гимзе. Просматривается 100 полей зрения, в 1 мл можно обнаружить до 10 паразитов. Для того чтобы возбудителя увидеть под микроскопом, каплю окрашивают специальным красителем. После окраски эритроциты подвергаются гемолизу, а плазмодий – деформации. Поэтому не всегда можно распознать вид возбудителя. В данном анализе объем крови в десятки раз больше, чем при исследовании тонкого мазка. Диагностику заболевания всегда начинают с «толстой капли».   

Учет результатов

Оценка результата проводится в крестах «+». Выглядеть результат может следующим образом:


  • «+» – на 100 полей зрения насчитывается от 1 до 10 паразитов.
  • «++» – на 100 полей зрения насчитывается от 11 до 100.
  • «+++» – на 1 поле зрения насчитывается от 1 до 10.
  • «++++» – на 1 поле зрения насчитывается более 100. 

Ответ выдается после того как будут просмотрены 200-300 полей зрения.

Мазок крови

Используется как подтверждающий тест. То есть если есть подозрение на присутствие малярийного плазмодия в толстой капле, делают дополнительно мазок для дифференцировки вида возбудителя. Помимо этого, обязательно учитывают морфологические изменения красных телец.

Иммунологические методы

Диагностика иммунологическим способом (ИФА) направлена на обнаружение в сыворотке антител к паразиту. Как только он попадает в организм человека, иммунная система активизируется и в ответ на инфекцию выделяет специфические белки или антитела. При постановке реакции сыворотка пациента капается в микролунки, на дно которых нанесены антигены возбудителя. Суть заключается в том, что если у человека имеются антитела к данному паразиту, то они начинают взаимодействовать с его антигенами, по принципу «ключ-замок». Используется для выявления инфекции в неэндемических регионах.


Ответ выдается как положительный или отрицательный. При положительном титр антител составляется более 1:20, отрицательном – менее 1:20.

Полимеразно-цепная реакция

Исследование на данное заболевание с помощью ПЦР практически однозначно выявляет возбудителя, так как метод основан непосредственно на определении генетического материала в организме человека. Для исследования производится забор венозной крови. Является дорогостоящим, поэтому его целесообразней делать как подтверждающий.

Результаты учитываются как положительный и отрицательный, если речь идет о качественной реакции. При положительном ответе для точного подтверждения назначают ПЦР количественную. При количественном определении в бланке указывается, сколько копий плазмодия в 1 л крови.

Еще к иммунологическим методам для выявления плазмодия относят экспресс-тест на малярию. Используется для экстренной диагностики паразита. Причем проводиться он может самостоятельно человеком при подозрении заболевания. Основан он также на выявлении специфических белков к возбудителю. В основном такие экспресс-тесты используются туристами при посещении опасных в отношении малярии регионов.

Учет результатов оценивается как положительный при наличии на тесте двух полосок (контроля и теста) и отрицательный – одна (контрольная полоска). Если отсутствуют обе полоски, значит, нужно провести новый тест.

Для того чтобы анализы были наиболее информативными, сдаются они натощак. За час до сдачи крови на малярию не стоит курить. Накануне ужин должен быть наиболее легким. Физические нагрузки также исключаются.


Источник: TrutenStop.ru

Показания:диагностика малярии, менингококковой инфекции.

Оснащение:

Предметные стекла, обезжиренные смесью Никифорова, 70% спирт, стерильные индивидуальные перья-копья, пинцет, ватные шарики, лоток для отработанного материала.

При исследовании крови на малярийные плазмодии готовят обычно 10 тонких мазков крови и 5 «толстых капель» крови.

Техника взятия крови и приготовление тонкого мазка:

— установить доверительные отношения с пациентом;

— объяснить цель и ход процедуры;

— вымыть и просушить руки;

— надеть перчатки, маску;

— обработать спиртом нижнюю фалангу 4 пальца руки;

— проколоть мякоть нижней фаланги 4 пальца индивидуальным пером-копьем;

— поместить перо в лоток для отработанного материала;

— первую каплю крови снять сухим ватным шариком;

— повернуть палец проколом вниз;

— прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови (или нанести каплю крови с помощью капилляра Панченкова);

— поставить шлифовальное стекло перед каплей крови под углом 45 градусов;

— продвинуть шлифовальное стекло до соприкосновения с каплей крови;

— когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, сделать мазок быстрым движением шлифовального стекла;


— подписать мазок;

— приготовленный мазок высушить на воздухе в горизонтальном положении;

— затем мазок фиксируют и окрашивают по Романовскому.

Техника приготовления «толстой капли» крови.

— приготовить тонкий мазок крови;

— на свежий мазок крови до того, как он высохнет нанести одну, две капли крови (дать им упасть);

Кровь растекается в правильный диск. При этом форменные элементы и паразиты не травмируются.

— высушить препараты на воздухе при комнатной температуре в горизонтальном положении в течение 3-4 часов;

— оформить направление в паразитологическую лабораторию;

— провести дезинфекцию лотка, пера-копья, пинцета, ватных шариков;

— снять маску, перчатки;

— вымыть и просушить руки;

— приготовленные «толстые капли крови» выщелачивают дистиллированной водой и окрашивают как мазки (не фиксируя).

Примечание:

— при взятии крови строго соблюдать правила асептики;

— предметные стекла держать пальцами за края, чтобы не оставить отпечатков;

— после высыхания капли через нее должен слабо просвечиваться крупный печатный текст;

— на одном предметном стекле можно приготовить 2 «толстые капли», кровь для исследования лучше брать во время лихорадочного периода и в межприступный период.


 

 

 

ПРОДЕМОНСТРИРУЙТЕ ТЕХНИКУ ВВЕДЕНИЯ 500 000 ЕД НАТРИЕВОЙ СОЛИ БЕНЗИЛПЕНИЦИЛЛИНА ВНУТРИМЫШЕЧНО

Показание: этиотропная терапия многих инфекционных заболеваний.

Инструкция 2 курса – внутримышечная инъекция

ПРАВИЛА РАБОТЫ В БОКСЕ.

Бокс предназначен для приема, осмотра, обследования, оказания необходимой лечебной помощи, проведения консультации инфекционным больным.

Для предотвращения ВБИ при работе в боксе необходимо строго выполнять все правила санэпидрежима и придерживаться принципа поточно-пропускной системы. Этому способствует устройство бокса и его оснащение.

Бокс имеет два предбокса, смотровую бокса, санитарный узел. Один предбокс предназначен для медперсонала. Вход в него находится со стороны коридора приемного отделения. В этом предбоксе имеется кран с раковиной, мыло, дезинфектант для рук, 3 полотенца, 3 халата (для врача, медсестры и санитарки), бак для дезинфекции, тумбочка, на которой находятся две емкости для ветоши (чистой и отработанной), внутри тумбочки – флакон с дезинфектантом. Второй предбокс предназначен для входа и выхода больного со стороны территории больницы. Смотровая бокса приемного отделения снабжена всем необходимым для приема и осмотра больного: рожковая вешалка для верхней одежды пациента и сопровождающих его лиц, весы, ростомер, кушетка, стол (или пеленальный столик), стул, емкости для чистых шпателей, градусников и для их дезинфекции. Вся мебель должна быть деревянной, пластмассовой или с кожаной обивкой. Стены покрашены масляной краской. Каждый бокс снабжен уборочным инвентарем, предназначенным для использования только в данном боксе, имеет четкую маркировку.


В боксах предназначенных для лечения больных имеется санитарная комната, и окно для подачи пищи и лекарств.

В боксе должен приниматься только один больной, несмотря на сходство предварительных диагнозов во избежание последствий возможной ошибки в диагнозе и перекрестного заражения.

Перед входом в предбокс медперсонал надевает маску, плотно закрывает дверь в коридор (во избежание прямого потока воздуха между боксом и коридором), моет руки, просушивает их, надевает на халат второй халат, шапочку для работы именно в этом боксе, заходит в смотровую бокса, плотно закрывает дверь. Осмотрев больного, выходит в служебный предбокс, плотно закрывает дверь, снимает второй халат, шапочку, моет руки, дезинфицирует, просушивает их, выходит из предбокса, плотно закрывает дверь.

Каждый инфекционный больной осматривается на педикулез и заразные кожные заболевания. На него заполняется медицинская статистическая документация, а также карта экстренного извещения (ф. 058/у).

Осмотренный больной в сопровождении курьера направляется для лечения в отделение, соответствующее профилю его заболевания, выходя через тот предбокс через который входил.


После осмотра каждого инфекционного больного обязательно производится заключительная дезинфекция с кварцеванием и проветриванием (с учетом механизма передачи инфекции).

 

 

 

Источник: cyberpedia.su

Основной метод лабораторной диагностики малярии – обнаружение эритроцитарных паразитов в толстой капле или мазке крови. В практической работе исследуют преимущественно толстые капли, так как за один и тот же промежуток времени в толстой капле можно просмотреть в 30- 50 раз больший объем крови, чем в мазке, а следовательно, и количество плазмодиев в ней больше. К мазку обращаются лишь в тех случаях, когда видовую принадлежность найденных паразитов по толстой капле установить не удается. Для выявления возбудителей малярии кровь берут при первом же подозрении на эту инфекцию независимо от температуры тела (лучше всего во время лихорадки или сразу после озноба), поскольку паразиты циркулируют в крови и в интервале между приступами.

Предметные стекла, на которых готовят препараты, должны быть хорошо вымыты и обезжирены. Кровь берется с соблюдением правил асептики. Кожу пальца протирают спиртом и прокалывают стерильной иглой-копьем или толстой инъекционной иглой. Если кровь из мякоти пальца вытекает плохо, то больного просят сделать несколько энергичных движении рукой, кистью и слегка массируют палец. Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным стеклом.


Тонкие мазки крови приготавливают по методике, общепринятой для гематологических исследований. Мазок не должен доходить ни до конца, ни до краев предметного стекла. Поэтому капля крови должна быть диаметром не более 2–3 мм. Предметное шлифованное стекло, которым делается мазок, должно быть уже стекла, на которое наносят мазок. Для этого углы шлифованного стекла обламывают пинцетом. В целях приготовления мазка шлифованное стекло славят перед каплей крови под углом 45° и продвигают вперед до соприкосновения с ней. Когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, быстрым дви-жением делают мазок.

Для приготовления толстой капли крови на предметное стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм. Эту каплю размазывают иглой или углом предметного стекла в диск диаметром 10–15 мм. Толщина капли должна быть такой, чтобы сквозь нее можно было читать газетный шрифт Мазки не должны быть толстыми, поскольку после высыхания они растрескиваются и отстают от стекла. Обычно на стекло наносят 2–3 капли на некотором расстоянии одна от другой. Взятые капли должны быть отмечены. На обратной стороне стекла восковым карандашом указывается фамилия больного или соответствующий регистрационный номер.

Очень удобно наносить толстую каплю на влажный толстый мазок крови. В этом случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Простым карандашом на мазке делается маркировка препарата Такой препарат удобен еще и тем, что в мазке довольно хорошо сохраняется часть пораженных эритроцитов, а это важно для уточнения вида паразита. Преимущество данного метода в том, что капля, нанесенная на мазок, удерживается более прочно, чем нанесенная непосредственно на стекло.

Приготовленные толстые капли высушивают при комнатной температуре не менее 2–3 ч без какого-либо дополнительного подогревания во избежание фиксации крови. После высыхания капли на нее наливают краску Романовского- Гимза. разведенную как обычно (2 капли краски на 1 мл дистиллированной воды). Продолжительность окраски в среднем составляет 30- 45 мин. Окрашенную каплю осторожно ополаскивают водопроводной водой (сильная струя может смыть каплю) и просушивают в вертикальном положении. Фильтровальной бумагой ее высушивать нельзя. При окраске капли в водных растворах красок происходит выщелачивание гемоглобина из эритроцитов, вследствие чего в окрашенной капле эритроциты уже не видны. Из форменных элементов сохраняются лейкоциты и тромбоциты.

Мазки фиксируют, помещая их на 3 мин в метиловый или на 10 мин в 96% этиловый спирт. Зафиксированные препараты высушивают на воздухе, защищая от пыли и мух. Потом препараты помещают в специальный контейнер и окрашивают азур-эозиновым красителем по Романовскому – Гимза на протяжении 20- 30 мин.

По истечении этого срока контейнер подставляют под слабую струю воды и промывают. После того как из контейнера польется неокрашенная вода, остатки ее сливают и промывают еще раз. Не рекомендуется сначала сливать краску, а затем промывать мазок водой, поскольку пленка, образовавшаяся на поверхности красителя, может попасть на препараты и оказаться причиной Диагностической ошибки. Капля на мазке окрашивается так же, как толстая капля.

Промытые препараты высушивают и исследуют под микроскопом. В зараженных эритроцитах видны плазмодии малярии с голубой цитоплазмой и ярко-красным ядром. Нахождение плазмодиев малярии в крови больного является неоспоримым доказательством болезни.

Источник: indbooks.in

ЛаборантПриготовление мазка крови и толстой капли для диагностики малярии.

  1. Перед манипуляцией наденьте перчатки.
  2. Подготовьте необходимое оборудование и инструментарий:
  • Скарификатор одноразового использования.
  • 70% раствор этилового спирта.
  • Ватные шарики.
  • Предметное стекло.
  • Предметное стекло с шлифованной краем.
  • Чашку Петри.
  • Стерильный лоток.
  • Лоток для отработанного материала.
  • Сухое мыло.
  • Марлевую салфетку.

Инструментарий и материал должны быть стерильными. Предметное стекло — чистое, сухое, обезжиренное.

3.  Подготовка пациента.

  • Предложите пациенту сесть удобно на стул.
  • Объясните ему суть манипуляции.
  • Выясните, какая рука у пациента нерабочая.
  • Помассируйте безымянный палец.
  • Обработайте кожу ногтевой фаланги ватным шариком, смоченным 70% этиловым спиртом по всем правилам и осушите вторым (сухим) ватным шариком.
  • Соблюдайте правила этики и деонтологии при общении с пациентом.

4. Приготовление мазка крови.

  • Сделайте прокол кожи скарификатором.
  • Первую каплю снимите сухим ватным шариком.
  • Прикоснитесь нижней поверхностью предметного стекла ко второй капле на пальце на расстоянии 1-1.5 см от края стекла.
  • Переверните стекло каплей вверх и возьмите в левую руку боковые ребра стекла. Капля располагается сверху и справа.  Диаметр капли на стекле должен быть 2-3 мм.
  • Правой рукой установите стекло с шлифованной краем слева от капли под углом 450 с наклоном в сторону капли. Стекло с шлифованным краем должно быть немного уже предметного стекла с каплей крови. Продвигайте шлифованный край вправо до соприкосновения с каплей и подождите, пока кровь растечется по краю шлифованного стекла.
  • Не надавливая, быстрым равномерным движением проведите стеклом с шлифованной краем по предметному стеклу, пока капля не будет исчерпана. Мазок должен быть тонким и равномерным, иметь светло-розовую окраску, просвечивать, занимать ½ — ¾  стекла и заканчиваться щёточкой
  • Если крови выделилось недостаточно, предложите пациенту опустить руку вниз — выжимать каплю крови нельзя!
  • Не прикасайтесь предметным стеклом к коже!

5. Приготовление «толстой капли».

  • На предметное стекло нанесите 2-3 капли крови на небольшом расстоянии друг от друга.
  • Стеклянной палочкой или углом другого предметного стекла смешайте их.   Смешивайте легко, чтобы образовалась пятно диаметром 1,5 см. Слой крови не должен быть слишком толстым, иначе при высыхании образуется просто корка, которая отвалится.

6. Оформите сопроводительную документацию по известным Вам правилам и требованиям.

7. Транспортировка в лабораторию.

  • Подсушите мазок и толстую каплю на воздухе. На поверхности стекла ближе к началу мазка напишите номер, совпадающий с номером на направлении.
  • Изготовленные препараты уложите в чашку Петри и в таком виде транспортируйте в лабораторию.

8. Поместите использованное оборудование в дезинфицирующий раствор.

9. Проведите обеззараживание перчаток.

Источник: infection-net.ru

Диагностика малярии с использованием микроскопического метода

Микроскопия препарата «толстая капля» и тонкого мазка, позволяющая обнаружить паразитов, их количество и видовую принадлежность, является ведущим методом диагностики малярии. Она проводится при малейшем подозрении на это заболевание, независимо от температурной реакции пациента. Для определения видовой принадлежности паразитов и стадии заболевания используется тонкий мазок крови. В толстой капле локализуется больше паразитов, чем в мазке. Этот метод диагностики превосходит методику определения наличия возбудителей малярии в тонком мазке крови в 20 — 40 раз.

В периферической крови паразиты обнаруживаются через определенное время после заражения:

  • при 3-х дневной малярии — через 8 — 12 дней,
  • при тропической — от пяти с половиной дней до 12,
  • при 4-х дневной — через 15 — 21 день,
  • при малярии, подобной 3-х дневной — через 9 — 15 дней.

Паразиты в крови присутствуют как во время лихорадочного приступа, так и в межприступный период и при паразитоносительстве.

Техника приготовления «толстой» капли

Полученная при проколе пальца капля крови наносится на предварительно очищенное и сухое предметное стекло и размазывается до получения пятна 1 см в диаметре. После подсушивания на воздухе предметное стекло заливается краской Романовского—Гимзы. По истечении 40-минутной экспозиции препарат ополаскивается под проточной водой и подсушивается при комнатной температуре, установленный в вертикальное положение.

Под микроскопом исследуется не менее 100 полей зрения. Более эффективным считается исследование 2-х толстых капель в течение 2,5 минут, чем 1-й капли в течение 5-и минут. 100 полей зрения просматриваются даже в том случае, когда малярийные плазмодии выявились уже в первых полях. Это производится для того, чтобы не пропустить микст-инфекцию.

Порог обнаружения паразитов

Порогом обнаружения малярийных плазмодиев называется минимальная концентрация возбудителей, которую возможно выявить при микроскопировании препарата «толстая капля». При заболевании этот показатель составляет 5 паразитов в одном микролитре крови. При просмотре 100 полей зрения обследуется 0,2 мкл крови.

При наличии косвенных признаков малярии (пребывание в эндемичных зонах, гипохромная анемия, обнаружение пигмента в моноцитах) и отрицательных результатов исследования препаратов «толстая капля», исследование вновь повторяется более тщательно, и не одно, а серия, состоящая из 4 — 6 препаратов при одном уколе, либо полученных при заборе крови, который производится 4 — 6 раз в сутки в течение 2 — 3 дней.

Интенсивность паразитемии определяется знаком «+».

  • 1 (+) обозначает выявление от 1 до 100 паразитов в 10 п/зр, что соответствует 5 — 50 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 2 (+) обозначает выявление от 10 до 100 паразитов в 10 п/зр, что соответствует 50 — 500 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 3 (+) обозначает выявление от 1 до 10 паразитов в 1 п/зр, что соответствует 500 — 5000 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 4 (+) обозначает выявление от 10 до 100 паразитов в 1 п/зр, что соответствует 5000 — 50000 плазмодиям в одном мкл крови;
  • 5 (+) обозначает выявление более 100 паразитов в 1 п/зр, что соответствует более 50000 плазмодиям в одном мкл крови.

Интенсивность паразитемии можно вычислить по количеству паразитов на 100 эритроцитов в 10 полях зрения, либо по соотношению числа паразитов и лейкоцитов в 1 мкл крови.

По интенсивности паразитемии определяется прогноз при тропической малярии. При других видах заболевания более 2% эритроцитов не поражается.

Формы малярийных плазмодиев в разные фазы развития

В препарате крови «толстая капля» возможно определить плазмодии малярии, находящиеся на разных стадиях развития — трофозоида, кольца, шизонта, морулы, и гаметы.

Контроль эффективности лечения

При адекватном лечении малярии уровень паразитемии в течение суток снижается на 25% и более, а через 3 суток от начала лечения он должен составлять не более 25% от исходного. В случае обнаружения паразитов на 4-е сутки от начала лечения свидетельствует о развитии лекарственной резистентности возбудителей.

Кратность проведения исследования

При выявлении малярии микроскопическое исследование препаратов крови проводится ежедневно. При тяжелой форме тропической малярии микроскопия проводится 2 раза в день до исчезновения возбудителей в крови и далее еженедельно до 28 дня лечения с целью оценки его эффективности и выявления резистентности к противомалярийным препаратам.

При инфицировании P. malariae и P. falciparum форма и размеры эритроцитов не изменяется. На фото деформированные эритроциты больного малярией (микрофотография в сканирующем микроскопе).

Иммунологические методы диагностики малярии

С помощью серодиагностики малярии возможно выявить в сыворотке крови пациента антитела и растворимые паразитарные антигены. Серологические реакции показаны к применению в случаях появления у больных лихорадки неясного генеза, гепатоспланомегалии, анемии, а также для исследования крови донора — предполагаемого источника инфекции. Серологические реакции применяются при эпидемиологическом наблюдении за лицами, проживающими в неблагополучных по малярии в прошлом территориях.

Чаще всего при диагностике малярии применяется НРИФ — непрямая реакция иммунофлуоресценции. Используются так же ИФА, РИГА и др. Внедряется в практику использование реакции энзим-меченых антител (РЭМА).

В случаях очень низкой паразитемии показано применение ПЦР (полимеразной цепной реакции). Дороговизна и сложность применения данной методики не позволяет широко ее использовать.

Разработаны новые методы диагностики малярии — экспрессного микроскопического анализа препаратов крови с использованием флюоресцирующих красителей, позволяющие в течение двух минут выявить паразитов тропической малярии, количество которых более 60 в 1 мкл гемолизированой крови.

При малярии антитела появляются на 8 — 27 день паразитемии. Первыми появляются антитела IgM, затем — антитела IgG. Антитела после перенесенной малярии и успешного излечения могут длительно сохраняться в крови человека — от 0,5 до 2 и даже 20 лет.

Источник: microbak.ru

Толстая капля на малярию

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *

Этот сайт использует Akismet для борьбы со спамом. Узнайте как обрабатываются ваши данные комментариев.